細胞污染

1. 細胞培養，被污染

細胞污染？ 細胞產品專家齊氏生物建議您先搞清楚污染的原因
1）細菌（會出現培養液變混濁，pH改變，污染後細胞發生病理改變，胞內顆粒增多、增粗，最後變圓脫落死亡，造成試驗失敗和細胞株丟失。）

2）真菌（可見培養液中漂浮著白色或淺黃色的小點，有的散在生長，培養液一般不發生混濁；倒置顯微鏡下可見絲狀、管狀或樹枝狀的菌絲縱橫交錯在細胞之間或培養基中，有的呈鏈狀排列。）

3）支原體（部分敏感細胞可見細胞生長增殖變慢，部分細胞變圓，從瓶壁脫落。但多數細胞污染後無明顯變化，或略有變化，若不及時處理，還會產生交叉污染。 ）

可以從組織清洗、實驗室環境滅菌、無菌操作規范等幾個方向查找一下原因。

2. 細胞污染，是何種細菌

10小時，大多是細菌污染，塗片用高倍鏡檢查看看

3. 細胞污染問題

黑色雜質?描述不清楚，如果顯微鏡下靜止不動，可能是棉花火燒後的灰燼，問題不大，如果游動的話，並且黑點數量增長，一定是污染了，有條件的話，最好舍棄細胞,用抗生素挽救的話，對細胞也有很大的損傷。
貼一些東西你看看，如果還是不明白，照張照片發到丁香園bbs問問~~
常見的污染如下：
1、細菌：細菌在普通倒置顯微鏡下為黑色細沙狀，根據感染細菌的不同，可有不同的外形，培養液一般會渾濁變黃，對細胞生長影響明顯。
仔細檢查一下器皿的滅菌情況，是否在高壓滅菌時放氣時間足夠，壓力足夠！尤其是和儲存培養液接觸的移液管等物品，連續兩次污染的話有可能造成儲存液污染，一定要注意！下次使用前檢查一下培養液是否存在渾濁的現象！
可在培養液中加相應的抗生素處理

2、黴菌：培養液是清亮的，倒置顯微鏡下無雜質，37度孵箱培養2-3天，仍清亮，但出現絮狀雜質，鏡下可見呈細絲狀的團狀漂浮物，可看到明顯的菌絲，細胞仍可生長，但時間長之後，細胞的活力狀態變差，
用硫酸銅溶液擦拭CO2孵箱內，再把水盤里也加上飽和量的硫酸銅。或者在培養箱的托盤加入飽和的消毒磷酸氫二鈉高鹽液體,可以防止黴菌污染。

3、支原體：黑色的，好象多為多形，培養液一般培養液一般會渾濁，原體感染，國內血清很多都沒有做支原體陰性檢測，而支原體是牛血清中最常見的微生物之一。而且它不能用過濾的辦法除去。支原體感染細胞以後，細胞病變不很明顯，只是慢慢死去。
用泰樂菌素，獸用支原體病的葯，但可用於細胞培養，無任何不良反應。Sigma公司的使用時用50ug/ml Tylosin培養液培養6天或連續傳兩代即可清除支原體污染。如果作為常用的抗生素的話, 建議用8ug/ml的濃度。

4、黑蛟蟲：可以穿透濾膜，也可以通過空氣傳播，低倍下為黑色點狀，高倍下可看見黑色的小蟲游來游去，培養液也是不渾的，一般不會太影響，細胞還是可以用的。常常是細胞生長狀態良好，且觀測到的運動物無明顯增多，且培養液顏色、透明度無明顯變化，可在同一批號的血清養的細胞中發現類似現象。對細胞生長狀態不會有明顯影響，在細胞增殖旺盛之後會自然消失，除更換血清外無須特殊處理。建議如果細胞有可能是此種污染的話，可以增加細胞的種板密度，以提高細胞的生存率。

5、真菌：一般培養液清亮，不變色，鏡下有絲狀物，有些真菌開始很像死細胞碎片，只是它很多很多的小塊很清楚，象珊瑚狀，不象細胞碎片分不清，慢慢的會長出很細的黑色絲狀物。真菌生長的比較慢，不象細菌那麼容易被發現，但是一旦發現有它的存在細胞就被污染了，也很難救活了。

6、原蟲：培養液可輕微渾濁，顯微鏡下那些細小的點狀物數量非常多，輕微活動，細胞雖然可以生長但繁殖速度卻明顯減慢，而且細胞狀態不好，邊緣不清楚，細胞不透亮。他們與細胞可共生但會與細胞爭奪營養。這種共生是非常普遍的，但他們的數量小，細胞站優勢所以不會影響到細胞的正常生長，只有當他們到達一定的數量時就會影響到細胞的生長，最終形成惡性循環。

污染的可能原因：可能原因很多比如配液消毒問題、操作問題、環境問題等等
關於培養基的無菌狀況，取培養基至培養瓶中（不加細胞），37度試培養一段時間後觀察。如果沒有細菌生長 就是操作的問題。
也可以在培養基中事先加入雙抗（硫酸鏈黴素和氨苄青黴素）。但雙抗有時會影響細胞的狀態，所以在做轉染、檢測細胞某項指標前一定要撤去雙抗，以避免影響實驗結果。

4. 導致細胞污染原因的有哪些

博凌科為生物科技-為你解答：養細胞就像養孩子，甚至比養孩子還難。忘記是誰這么說了。上次一次性死了14瓶細胞，前後分析都是培養基污染了。然後換了新培養基，換了新的種子， 開始長得不錯，但今天看了一下，又污染了，培養基變渾濁。我養的是HUVEC，8月4日從一個老師處取種子（8月3日復甦），他原先是用高糖DMEM培養 的，而我用的是1640。在倒置顯微鏡下，細胞形態不是太好，而且有小黑點。我用1640換掉原先的DMEM培養基，5，6日兩天還可以，只是細胞長得 慢。但今天就污染了。養細胞真是不知道什麼時候就污染掉了。決定把血清和培養基檢測一下，看看是不是在這個環節上出問題了。可能還有別的問題，戰友們多多 指教。應該是細菌污染，如果是黴菌的話,一般不會這么快，你前後用的是不是同一種培養液？如果是的話,立即停用。首先要排除培養液的問題，因為同時有14 瓶細胞污染，培養液的問題比較大。因此配製培養液後一定要做無菌試驗，過濾時要注意濾膜本身及其安裝是否有問題；其次，要排除培養液保存問題，比如，瓶蓋 有裂隙或者是蓋子與瓶口不合，密閉性差，容易細菌污染。還有就是操作過程中出了問題，不注意無菌操作，消毒不嚴格，造成培養液的污染。超凈工作台、手的消 毒，拿培養瓶時不要拿蓋子及其周圍，培養液開蓋後要斜著放，瓶蓋橫放，蓋口不要向上或向下，培養瓶等盡量放在工作台的中間等等。總之，關鍵是無菌及無菌操 作，做到這兩點應該不會出什麼差錯了。

5. 細胞污染

沒有圖片，不抄好判斷，細胞污染種類有很多，不同污染現象也各不相同，一般常見的支原體污染用熒光檢測一下，黴菌，念珠菌污染等建議重新復甦細胞，如果是黑膠蟲污染建議在觀察幾天看看，如果漲勢明顯，則重新培養，如果漸漸變弱，則可繼續培養，具體的細胞污染現象及解決方法，這里有一篇文章細胞培養FAQ可以看看

6. 求助，貼壁細胞污染後表現為什麼樣

一、貼壁生長的細胞核懸浮生長的細胞都有很多種。 活體體內的細胞當離體置於體外培養時大多數均以貼壁方式生長，主要包括正常細胞和腫瘤細胞，比如成纖維細胞，骨骼組織（骨及軟骨），心肌與平滑肌、肝、肺、腎、乳腺皮膚神經膠質細胞，內分泌細胞，黑色素細胞及各種腫瘤細胞等。 少數細胞在體外培養是懸浮生長，包括一些取自血、脾或骨髓的培養細胞，尤其是血液白細胞以及癌腫細胞。 二、貼壁細胞與懸浮細胞在培養條件上的區別 貼壁細胞要加血清，不貼壁的可以不加血清。 三、貼壁細胞與懸浮細胞在培養方式上的區別 不貼壁的一般用各種搖瓶和反應器培養，貼壁的一般用方瓶或孔板培養，使用微載體時也可以用反應器培養。 四、貼壁細胞和懸浮細胞在傳代方法上的不同 由於貼壁細胞貼壁生長，接觸抑制，長滿一瓶後貼壁較緊，不易取出。這時必須用胰蛋白酶或者膠原蛋白酶處理，使其分散開後取出，然後在放入新的培養瓶中培養。 懸浮細胞其實也有貼壁現象，只是貼壁不牢。可以直接用吹打發是細胞掉落下來，進行傳代。 五、貼壁細胞與懸浮細胞在顯微鏡下的區別 貼壁細胞分為兩種，上皮細胞型和成纖維細胞型，在顯微鏡下觀察時，貼壁細胞在瓶底伸展並延伸成梭型或不規則的三角形或扇形，而且晃動培養液時，細胞不動。 懸浮細胞漂在培養液中，呈圓形，晃動培養液時細胞也隨著漂動。

7. 細胞污染怎麼辦

要看是什麼污染，如果是支原體污染，一般肉眼觀察不到。支原體感染發生後能改變細內胞的DNA，容RNA及蛋白表達，它對細胞的生長率影響較小。可以通過間接免疫熒光法，免疫印跡和PCR技術快速高效地檢測到。
如果細菌污染，那挽回的可能性很小。因為細菌比細胞生長的要快，需要的生長條件也沒那麼高的要求。如果輕微的污染可以通過加入高濃度（正常的10倍）抗生素的培養基反復洗細胞，有可能清除。如果是杭州的可以咨詢浙江波因醫葯科技有限公司，可以提供這方面的技術服務

8. 細胞污染問題

黑膠蟲
1、 黑膠蟲概況：
在細胞培養的時候，有時會在400倍顯微鏡下看到小黑點在動，小黑點有時呈點狀，有時呈小的片狀，運動形式為在原地振動（類似布朗運動），這種小黑點既不是細菌、黴菌，也不是支原體（我們曾經請周守長用血平板培養過，沒有菌落出現），目前業內人士稱其為「黑膠蟲」。
黑膠蟲到底是否為生物？這個一直是業內人士的疑惑。黑膠蟲一般是存在血清里的，而血清通常是經過0.1μm濾膜過濾的,所以血清里不可能存在細菌、黴菌及支原體等微生物。如果說黑膠蟲不是生物，它會不斷增多，達到一定數量時會與細胞競爭性生長，與細胞競爭培養基中的營養，從而使得細胞營養不足而死亡。
不管對於黑膠蟲的爭論如何,但有幾個是目前大家公認的：
① 與細胞競爭性生長，對細胞生長有不利影響。
② 「黑膠蟲」會增殖，增殖多時，視野下一大片都為「黑膠蟲」。
③ 「黑膠蟲」與血清有關，與血清質量有很大關系。
2、目前對「黑膠蟲」的定論：有2種解釋：
第一， 黑膠蟲為生物。它是小於細菌的生物，直徑小於0.1μm，大多國外血清中多見，可能是國外牛血清中含有的某種原蟲。只要它是生物，那麼在培養基中一定會對細胞有影響。
第二， 黑膠蟲不是生物。國內的血清中，通常滅活之後都會有絮狀沉澱出現，而黑膠蟲出現時，所使用的血清被反復凍融過多次。所以推測，所謂的「黑膠蟲」其實就是血清中的某些蛋白成分的物質，經過滅活之後喪失活性，在培養基中，鏡檢見到的運動其實是這些物質在溶液中做「布朗運動」。隨著細胞消耗培養基，這些物質越來越多，最後細胞所用的營養消耗完，細胞容易死亡。
3、對於「黑膠蟲」的處理方法：
首先，血清買回來滅活前凍融應逐級凍融，即按照-20℃——4℃完全融化後，再置入水浴中，與室溫一起升高到56度，這樣的目的是避免溫度驟變，導致血清中的營養物質喪失活性。
第二，血清滅活後分裝保存。按照每次用血清的量分裝，盡量減少血清凍融的次數。分裝時注意無菌。
第三，細胞培養時血清濃度稍大一些。通常細胞培養血清濃度為10%-15%，但如果血清凍融次數過多，那營養物質喪失活性，按15%的濃度配製事實上達不到15%的營養成分，故培養基配置時一般用18%-20%的血清。
這種黑膠蟲，在國外稱其為- 納米細菌，現將我看到的一些資料轉述如下，希望對大家有所幫助：
1.納米細菌的發現
芬蘭的一個科學家Ciftcioglu et al 在其細胞培養過程中, 發現在胎牛血清中存在一種直徑50-500 nm的微粒; 這種顆粒物對伽瑪射線具有很強的耐受性; 針對包括支原體在內的所有已知微生物的特異性檢測實驗均為陰性; 這種顆粒物在血瓊脂培養基以及支原體培養基中無法生長, 通常的細菌染色方法難以著色. 因此, Kajander判定這是一種新的微生物, 根據其體型微小並且棲息在血液中的特點, 將其命名為Nanobacterium sanguineum, 簡稱Nanobacteria, 中文譯名納米細菌, 並將菌種保存於德國微生物存儲中心 (DSM No: 5819-5821, the GermanCollection of Micro-organisms, Braunschweig, Germany).
2 納米細菌的生物學特性
2.1 納米細菌——哺乳動物體內最小的細菌 細胞培養時所使用的血清通常採用過濾法達到無菌的目的, 通常採用直徑0.1 μm的濾膜過濾除菌. Kajander研究發現, 0.1 μm
的濾膜過濾並不能有效地清除血清中的納米細菌, 但是血清經過0.05 μm的濾膜過濾則能有效清除納米細菌污染. 細胞培養條件下的納米細菌經過0.2 μm的濾膜過濾後約有3%的納米細菌可以通過濾膜, 而在加壓過濾的情況下, 約有50%的納米細菌可以通過0.2 μm的濾膜. 剛剛經過過濾的納米細菌在相差顯微鏡下無法發現, 但在不含血清添加劑的細胞培養液中培養24 h後, 即可以用相差顯微鏡觀測到. 電子顯微鏡觀察顯示, 納米細菌的平均直徑為200 nm, 而子代納米細菌的最小直徑僅50 nm. 傳統的觀點認為, 只有當細胞直徑在不低於140 nm時, 才能維持其最基本的新陳代謝. Kajander認為, 納米細菌可能是地球形成早期、在原始大氣條件下的一種最原始的生命形式, 因此不能用衡量已經經過幾十億年進化的生命形式的觀點去衡量這種古老的生命形式, 並且推測, 納米細菌遭受不良因素的侵害後可以形成許多的體形微小的碎片, 並將其釋放到環境中, 每一個碎片都可能攜帶部分遺傳信息, 在特定條件下, 這些"基本"顆粒聚集在一起形成群落, 當足夠數量的"基本"顆粒提供完整的遺傳信息時, 則可以形成新的納米細菌.
2.2 納米細菌緩慢的增殖周期
微生物學家通常是通過對某種微生物進行培養, 進而了解該種微生物的特性. 然而, 並非每種微生物都是可以在實驗室中進行培養的,主要原因在於這些微生物的培養條件我們並不清楚, 其生存環境以及是否與其他微生物存在共生關系我們並不十分了解. 納米細菌就是一種對生長環境要求非常苛刻的微生物, 其新陳代謝率極為緩慢, 僅為普通細菌的1/10 000. 研究發現, 納米細菌主要利用環境中的氨基酸而不是葡萄糖來提供能量, 谷氨醯胺、天冬醯胺以及精氨酸均可被其利用. 在37 ℃有50-10 mL/L的二氧化碳及900-950 mL/L的空氣存在的潮濕環境下, 並且在含有100 mL/L胎牛血清和適量谷氨醯胺的pH值7.4的細胞培養基中, 納米細菌能夠緩慢生長, 平均倍增時間為3 d,而在無血清的細胞培養基中, 其增殖速度變慢, 細菌倍增時間可延長至5-6 d, 在添加適量促納米細菌生長因子BGF(一種桿菌培養上清的超濾液)或N3(納米細菌培養上清的超濾液)的條件下, 其增殖速度加快, 倍增時間可縮短至0.6-1 d. 在有促納米細菌生長因子BGF存在的條件下, 納米細菌甚至可以在固體培養基中生長, 並形成直徑l mm大小的細菌集落.
2.3 納米細菌獨特的生物礦化現象
當在含血清的培養基中培養的納米細菌被轉移至不含血清的培養基中繼續培養時 (DMEM或RPMI-1640), 在1 a之內就可以觀察到納米細菌出現貼壁現象, 在1 wk之內, 就可以在納米細菌的周圍形成幾微米厚的生物被膜 (biofilm), 並且緊緊貼附於培養瓶底部, 而納米細菌棲息其中(這與在含血清培養基中培養的納米細菌的形態明顯不同), 此時其大小接近於一個酵母細胞, 2-3 wk以後, 由於生物被膜的增厚, 其直徑已近似於一個紅細胞的大小. 用EDX法對這種生物被膜的化學組成進行分析, 顯示其鈣磷的峰值與羥基磷灰石極其相似, 電子顯微鏡觀察以及傅立葉轉換紅外頻譜(fourier transform IR spectros, FTIR)分析顯示其主要成分為碳酸羥基磷灰石(carbonate hydroxyapatite), 而且,不論在有無血清作為添加劑的情況下, 都可以見到這種被羥基磷灰石包繞的納米細菌, 這種情況甚至可以在處於分裂期的納米細菌中見到. 納米細菌並不產生尿激酶和鹼性磷酸酶, 並且即便經過長達數周的培養, 其培養基的pH值也不會出現明顯的變化, 一直穩定在7.4左右, 這表明在納米細菌細胞膜表面所生成的羥基磷灰石結晶是源自於生物大分子的, 即生物礦化現象, 而並非是由於pH值改變所導致的簡單的物理結晶現象.納米細菌利用培養體系中的鈣、磷合成羥基磷灰石作為其生物被膜的主要成分, 這種生物礦化過程受到生長環境中某些因素的調控, 從而使其呈現不同的外觀, 如羥基磷灰石形、細菌被膜形、沙粒形、結石形和類似腫瘤的外形. （這也許就是國內的一些研究者們認為其是一些磷酸鹽類的無機物的部分原因吧！）。在含有新鮮血清的培養基中納米細菌的生物礦化現象程度較輕微, 這是由於血清中含有強效羥基磷灰石合成抑制因子, 骨鈣素 (osteocalcin) 和胎球蛋白(fetuin), 由於這些抑制蛋白的存在, 所以在有血清存在的情況下, 納米細菌的生物礦化作用受到明顯抑制. 當血清濃度降低時, 納米細菌的生物礦化現象增強, 在不含血清的培養體系中, 生物礦化現象劇烈而迅速. 盡管改良的Loeffler固體培養基中含有750 mL/L血清成分, 但血清蛋白成分在滅菌過程中受到破壞, 所以在此培養基中的納米細菌的礦化作用並不受抑制, 在此培養基中生長的納米細菌其菌落直徑可達1-5 mm. 另外, 當有乙二胺四乙酸(EDTA)存在時, 納米細菌的生物現象會受到明顯的抑制.由於礦化生物被膜的保護作用以及極其緩慢的新陳代謝率, 使納米細菌能夠耐受各種不利的物理條件和化學損傷因素以及多種抗生素的打擊.
2.4納米細菌的檢測方法 由於納米細菌在標准微生物培養基中無法生長, 並且即便是在最適宜其生長的細胞培養環境中, 納米細菌的生長也極為緩慢, 其新陳代謝率僅為普通細菌的萬分之一, 這使得許多基於檢測細菌新陳代謝的微生物學方法無法檢測納米細菌的存在. 由於納米細菌難以用傳統的火焰法和乙醇法固定, 並且大多數染料無法穿透其細胞壁, 而且不能用普通顯微鏡對其進行觀察, 因此常規的細菌學染色法並不能檢測到納米細菌的存在. 通過Kajander et al 的研究, 發現70℃干烤10 min, 可以將其有效固定; 另外, 用茜素紅S、剛果紅以及硝酸銀染料可以使納米細菌著色; 而培養狀態下的納米細菌可以在放大400倍的相差顯微鏡下清晰地觀察其生長情況; 用DNA熒光染料 (Dapi或Hoechst) 按普通細菌DNA染色的條件對納米細菌DNA進行染色均不成功, 而當按照線粒體DNA以及病毒DNA染色條件, 對納米細菌DNA進行染色時, 熒光顯微鏡下可以觀察到特徵性的熒光; 用納米細菌特異性抗體進行熒光染色也可以清晰地顯示納米細菌的存在; 利用電子顯微鏡對經過負染的納米細菌進行觀察, 可以清晰的顯示80-350 nm大小、單獨或聚集成簇的納米細菌以及其表面的生物被膜(biofilm)結構; 而用透射電鏡對納米細菌的超薄切片進行觀察, 可以清晰的顯示其內部結構。
可以發現如下的特點：
（1） 與細胞共生，細胞長的好或密度大的話，小黑點就少，反之則 多；
（2） 對抗生素無效；
（3） 可能通過培養箱空氣進行污染；
（4） 單用培養液及血清培養沒發現問題。
（5） 換掖沖洗後也無效。
以下是論壇里我找來的相關帖子內容
「黑膠蟲」是近十幾年才發現的一種細胞污染物，「黑膠蟲」的分類目前尚無鑒定確認。
「黑膠蟲」可寄生於動物細胞，也可以生存於培養基中，依靠細胞和培養基中的營養為生，並隨細胞傳代而傳代。「黑膠蟲」與細胞競爭性生長，開始時對細胞並沒有什麼影響，但當黑膠蟲的數量多到一定程度的時候， 細胞生長就會受到影響直至死亡，嚴重影響了科研活動的開展和進行。所以「黑膠蟲」的污染常在培養條件改變、細胞接種密度降低、細胞狀態不佳時顯現並使實驗中斷，尤其在凍存細胞復甦時可造成大量細胞死亡。
目前比較公認的觀點認為「黑膠蟲」是一種微生物，增殖緩慢但對細胞有損害，數量達到一定程度可引起細胞死亡，其來源可能是細胞本身的污染或從動物取材時污染造成的。該污染在全世界細胞實驗室中普遍存在，解決該問題是一個世界性難題
關於是什麼的問題的討論
A. 玻璃培養瓶中的類似氧化硅的東西（曾經有文獻報道過）
B. 據說這是黑膠蟲，又有人說是原生動物，好象也沒個統一的說法
C. 據病毒所和軍科院鑒定是一種寄生於牛血清內的一種原蟲，似乎和草履蟲和變形蟲有類似之處，然而由於課題經費不夠而不能繼續進行下去。
D. 有人說是納米級的細菌
其他的特點
（1）形態上有些像細菌，直徑約在0.5~1微米，
（2） 在400X倒置顯微鏡小，有典型的布朗運動（不規則的原地小距離抖動）。
（3） 細胞內好像也有存在，
（4） 但並不引起培養液混濁
（5） 時間稍長，細胞狀態明顯惡化，並最後死亡
大家的處理：
1.換好一點的血清（我覺著和血清的關系不大）。
2.如果是貼壁細胞的話，可用無菌的PBS洗幾次，可一定程度上緩解。若是懸浮的話，就不太好處理拉，可以向其中少加一點滋養細胞（從小鼠腹腔內取的巨噬細胞，這種細胞不分裂，過一陣就死掉了，做抗體雜交瘤融合的同志肯定知道）。加滋養細胞對有黑膠蟲的剛復甦的細胞很有效！還有就是實驗環境要注意好，保持細胞間整個環境的潔凈度。
3.換用進口的一次性塑料培養瓶。
4.建議清理無菌室所有物品，重新滅菌，用KMnO4熏蒸，按首次使用無菌室做，細胞重新復甦，。
5. 在換液前先加入生理鹽水並輕輕拍打，沖洗干凈後再加入培養液，堅持天天洗，傳代時加生理鹽水再離心一次，接種密度稍大一些，一段時間後，蟲子就會大大減少，對細胞的生長也不會有大的影響。
6.有材料稱minocycline具有一定的作用，可以和換液結合起來使用。

9. 污染了的細胞還能要麼

要看是什麼污染,如果是支原體污染,一般肉眼觀察不到.支原體感染發生後能改變細胞的DNA,RNA及蛋白表達,它對細胞的生長率影響較小.可以通過間接免疫熒光法,免疫印跡和PCR技術快速高效地檢測到.
如果細菌污染,那挽回的可能性很小.因為細菌比細胞生長的要快,需要的生長條件也沒那麼高的要求.如果輕微的污染可以通過加入高濃度（正常的10倍）抗生素的培養基反復洗細胞,有可能清除.

10. 細胞 污染嗎求助

從圖上看感覺你的細胞是懸浮的，但會出現這樣梭形的東西，是這個意思吧？你是專不是同一時間屬處理兩種細胞呢，如果短期內培養基顏色不變，染的話菌可以懷疑支原體污染（但支原體污染肉眼看不到，排除）。我覺得很有可能是你操作過程中帶入了別的細胞，比如貼壁細胞，圖中的長梭形形態上很像貼壁細胞。